Facteur antinutritionnel

Les facteurs antinutritionnels (ou parfois antinutriments) sont des composés chimiques, naturels ou synthétiques, qui interfèrent avec l'absorption des nutriments chez l'homme et les animaux[1]. Ils peuvent être spontanément présents dans la plante ou sa partie consommée, ou provenir de contaminations fongique ou depuis le sol [2].

L'acide phytique, naturellement présent dans les graines, est un exemple de facteur antinutritionnel.

Les modes de préparation des aliments, notamment la cuisson ou le traitement par la chaleur, sont la façon la plus efficace de les inactiver[3] (d'autres méthodes sont le trempage des aliments pour solubiliser les facteurs solubles, la fermentation naturele ou induite…). Les substances antinutritionnelles, parfaitement hétérogènes, sont parfois classées selon leur résistance à la chaleur[4]. L'élimination de ces facteurs antinutritionnels est un objectif permanent de l'amélioration variétale des végétaux cultivés [5].

Ces composés sont principalement des molécules de défense des plantes contre leurs phytophages (lectines, oxalates, phytates, goitrigènes, saponines, phytoestrogènes, tanins et galactosides) qui altèrent la digestibilité des nutriments (antiprotéases, chélateurs qui diminuent la biodisponibilité des minéraux, molécules indigestes voire même toxiques)[6].

Le haricot de Lima contient plusieurs facteurs antinutritionnels : lectines et phaséolunatine (ou linamarine). Ils se mangent impérativement trempés et cuits.

Sensibilité au mode de préparation des aliments et aux cultivars

La cuisson, la préparation et le traitement des aliments impactent la teneur en oxalate ou en lectines, l’ébullition et la cuisson à la vapeur sont les solutions les plus efficaces pour réduire la teneur en oxalate soluble dans l'eau [6]. Lors de tests réalisés sur 9 types de légumes, l'ébullition réduit considérablement la teneur en oxalate soluble (30 à 87%) davantage que la cuisson à la vapeur (5 à 53%) [7]. Chez le haricot et le soja la cuisson réduit les facteurs antinutritionnels sauf l'acide phytique [8].

Le trempage réduit les niveaux de lectines, phytates et d'oxalates, mais pas toujours le niveau d'acide phytique [8].

La teneur en facteurs antinutritionnels varie selon les cultivars de végétaux cultivés et aussi selon leur degré de maturité [9].

Mode d'action

Composés non directement toxiques

Les facteurs antinutritionnels sont à distinguer des composés toxiques susceptibles d'être naturellement présents dans les aliments, comme les glycosides cyanogènes (phytotoxines que l'on retrouve par exemple dans le sorgho, le manioc ou les amandes). Le point clé étant que les antinutriments interfèrent avec l'absorption de composés d'intérêt, mais ne sont a priori pas toxiques par eux-mêmes. Ces composés sont cependant souvent étudiés ensemble en raison des problématiques similaires vis à vis de l'alimentation et des effets délétères sur la santé[10],[11].

Les effets néfastes des facteurs anti-nutritionnels sur les animaux d'élevage ne sont pas tous inventoriés, notamment chez les poissons où l'action des phytates est nette [12].

Inhibiteurs enzymatiques

Certains composés végétaux, présents notamment dans le riz et les graines de céréales[13], peuvent inhiber l'activité de certaines enzymes, et ainsi compromettre la digestion. Cet effet antinutrionnel est parfois exploité plutôt qu'évité : des compléments alimentaires à base de phaséolamine sont ainsi proposés en tant qu'aide au régime, pour limiter l'absorption des glucides lents.

Le grain du haricot niébé contient moins de facteurs antinutritionnels que le haricot commun . (Le mangeur de haricot par Annibal Carrache)

Les principaux facteurs antinutritionnels

Lectines

Se liant avec les oses, les lectines peuvent interférer avec le métabolisme des glucides[10],[14]. En expérimentation animale de fortes doses de lectines de légumineuses ou farines de légumineuses crues altéraient la muqueuse intestinale, augmentent la perméabilité intestinale et en activant le système immunitaire [15]. On les trouve facilement dans les céréales (germe de blé), les lentilles, fèves ou pois, mais elles peuvent être présentes dans un grand nombre d'autres végétaux. Elles sont suspectées modifier le métabolisme intestinal et être inflammatoires [6],[16]. La phytohémagglutinine du haricot rouge représentait 40% des intoxications par plantes toxiques en Chine de 2004 à 2013 [9].

Les lectines sont irréversiblement détruites par le trempage, l'autoclavage, la fermentation et l'ébullition : faire bouillir les légumineuses (les haricots) pendant une heure à 95 ◦C a réduit l'activité hémagglutinante de 93,77 à 99,81% [17],[16]. En revanche, la cuisson au four à micro-ondes des fèves, pois, pois chiches, du soja, des lentilles qui détruit parfaitement leurs hémagglutinines et inhibiteurs de la trypsine, ne parvient pas à détruire les facteurs antinutritionnels du haricot commun [18].

Oxalates

Présents sous forme hydrosoluble ou de sels d'oxalate insolubles (principalement sous forme d'oxalate de calcium) dans les épinards, bette à carde, l'oseille, la betterave (feuille et racine), la rhubarbe, les noix, les patates douces et la pomme de terre, les oxalates solubles réduisent l'absorption du calcium par les intestins et le côlon et induisent la formation de calculs rénaux calciques [19],[6]. Ils sont détruits par la cuisson et la consommation de quantités adéquates de calcium et de potassium, rare sont les intoxications humaines, quelques cas sont notés chez le bétail [6].

La germination élimine les phytates des haricots mungo [20]

Phytates

L'acide phytique et ses sels sont susceptibles de complexer les ions métalliques et ainsi d'en limiter l'absorption intestinale. Si la réalité de cet effet n'est plus discutée, son ampleur est encore étudiée, notamment pour le cuivre, qui semble peu, voire pas, affecté[21], le fer dont la malabsorption paraît contrebalancée par un apport très biodisponible dans les céréales, le zinc et le calcium [22],[6].

Le trempage réduit les phytates du mil (28%), du maïs (21%), du riz (17%) et du soja (23%), la cuisson dans l'eau de trempage permet de réduire la perte de minéraux [23]. La germination des aliments peut réduire davantage les phytates : 60% chez le pois chiche tout en préservant la teneur en minéraux [24].

Les effets négatifs des repas riches en phytates sur l'absorption de certains minéraux sont compensés par la consommation d'aliments riches en acide ascorbique et en bactéries probiotiques .

Goitrigènes

Typique des Brassiceae (choux, feuilles de navet, chou chinois, etc.) et dans une moindre mesure du millet et du manioc, ils inhibent l'absorption de l'iode et provoquent une hypothyroïdie et/ou le goitre [6]. Les goitrigènes alimentaires comprennent 120 glucosinolates dont l'apport pour la santé est également positif (anti cancéreux) [25]. Parmi ces composés la goitrine et le thiocyanate produit par la digestion auraient des effets indésirables démontrés expérimentalement chez l'animal [26],[27].

Le consensus actuel (2020) est d'attirer l'attention des personnes atteintes ou susceptible d'atteinte d'une maladie thyroïdienne afin qu'elles cuisent leurs choux, brocoli, etc. dans une eau additionnée de sel iodé [6].

Le bois de Panama est très riche en saponines et en tanins. Il est depuis toujours utilisé dans les médicaments et comme complément alimentaire (E 999) sous réserve du respect des dosages [28]. Il est létal chez les poissons à faible dose [29].

Saponines

Les saponines sont décrites dans plus de 90 familles de plantes dont notamment le soja, l'olive, la peau de raisin, la figue de Barbarie, etc.[30] Elles ont chez l'homme des propriétés allélopathiques, anti-inflammatoires, hémolytiques, hypocholestérolémiantes et anticancéreuses démontrées, la saponine du soja B supprime l'élévation de la glycémie chez le diabétique, en revanche elles inhibent l'absorption des lipoprotéines ou du cholestérol de haute densité nécessaires dans l'alimentation [13],[10],[31],[32].

Ces saponines sont un facteur antinutritionnel chez les ruminants (réduction de leur digestibilité), la luzerne en contient qui limite son utilisation comme fourrage [33]. Les saponines sont généralement toxiques pour les animaux à sang froid, les insectes et les poissons d'où l'usage des plantes riches en saponines pour la pêche [34].

Phytoestrogènes

Principalement rencontrés chez le soja et les graines de lin[6]. Ces molécules présentent une similitude structurelle avec le 17-β-estradiol importante hormone sexuelle féminine ont des effets discutés sur la santé, elles perturberaient l'action du système endocrinien féminin et feraient courir un risque accru de cancers sensibles aux œstrogènes [35]. Les données épidémiologiques suggèrent que la consommation d'aliments riches en phytoestrogènes dans le cadre d'un régime alimentaire varié n'est pas préoccupante, mais bénéfique [6].

Les phyto-estroglycosides sont hydrolysées en aglycones assimilables par l'ébullition et la cuisson à la vapeur et aussi par la fermentation par Lactobacillus et Bifidobacteria [36],[37]. La conversion est quasi complète dans les laits de soja fermentés qui est traditionnelle en Asie (cheonggukjang coréen, le natto japonais, thai thua) [38].

La concentration en tanins des thés est variable selon la variété et le temps d'infusion

Tanins

Les tanins, sont fréquents dans l'alimentation, on les trouve dans les céréales, le thé, le cacao, le raisin, les pommes, les fruits à noyau, les noix, etc. Les tanins condensés (proanthocyanidines) sont des polyphénols végétaux abondants parmi lesquels : la catéchine, l'épicatéchine, l'épigallocatéchine [39]. Ils peuvent former des complexes avec les protéines et en réduire la digestibilité et impactent négativement l'absorption du fer, du cuivre et du zinc ainsi que des réserves de ces métaux [13],[6],[40]. On observe des carences ferriques dans les pays où les haricots sont un aliment de base [41].

Chez les personnes qui ont de faibles réserves de fer, en particulier certaines femmes, il est conseillé de limiter la consommation des aliments riches en tanin. La cuisson diminue la teneur en catéchine de certains aliments (la rhubarbe, les fèves et les poires), retirer la peau des fruits à coque réduit leur teneur en phénol jusqu'à 90%[42]. La teneur en catéchine du thé est variable selon les variétés, les provenances, elle augmente avec la durée d'infusion [43].

Galactosides

Les galactosides sont les sucres solubles les plus abondants dans le règne végétal après le saccharose[44]. Ces composés fermentescibles sont en grande partie à l'origine des flatulences qui accompagnent souvent la consommation des aliments riches en galactosides (légumineuses)[45]. Ils ont également d'autres effets négatifs : diminution de la quantité d'énergie métabolisable en raison de la fermentation anaérobie, effets osmotiques dans l'intestin à l'origine de diarrhées, interférence avec la digestion d'autres nutriments[46].

Sinapine

La sinapine se trouve dans les Brassicaceae, le colza, la moutarde, les tourteaux de soja, elle peut provoquer la présence de triméthylamine dans les œufs de poule d'élevage[47],[48].

Notes et références
  1. (en) Teresa Attwood, Peter Campbell, Howard Parish, Anthony Smith, Frank Vella, John Stirling, Oxford Dictionary of Biochemistry and Molecular Biology, Oxford, Oxford University press, , 736 p. (ISBN 978-0-19-852917-0).
  2. FAO, Le sorgho et les mils dans la nutrition humaine, Food & Agriculture Org., (ISBN 978-92-5-203381-3, lire en ligne)
  3. Matthias B. Schulze, Miguel A. Martínez-González, Teresa T. Fung et Alice H. Lichtenstein, « Food based dietary patterns and chronic disease prevention », BMJ (Clinical research ed.), vol. 361,‎ 06 13, 2018, k2396 (ISSN 1756-1833, PMID 29898951, PMCID 5996879, DOI 10.1136/bmj.k2396, lire en ligne, consulté le )
  4. Utilisation Des Aliments Tropicaux: Legumineuses Tropicales, Food & Agriculture Org., (lire en ligne)
  5. Jean-Claude Jaillette, Sauvez les OGM, Hachette Littératures, (ISBN 978-2-01-237887-2, lire en ligne)
  6. (en) Weston Petroski et Deanna M. Minich, « Is There Such a Thing as “Anti-Nutrients”? A Narrative Review of Perceived Problematic Plant Compounds », Nutrients, vol. 12, no 10,‎ , p. 2929 (ISSN 2072-6643, DOI 10.3390/nu12102929, lire en ligne, consulté le )
  7. Weiwen Chai et Michael Liebman, « Effect of different cooking methods on vegetable oxalate content », Journal of Agricultural and Food Chemistry, vol. 53, no 8,‎ , p. 3027–3030 (ISSN 0021-8561, PMID 15826055, DOI 10.1021/jf048128d, lire en ligne, consulté le )
  8. (en) Lan Shi, Susan D. Arntfield et Michael Nickerson, « Changes in levels of phytic acid, lectins and oxalates during soaking and cooking of Canadian pulses », Food Research International, vol. 107,‎ , p. 660–668 (ISSN 0963-9969, DOI 10.1016/j.foodres.2018.02.056, lire en ligne, consulté le )
  9. Yufeng Sun, Jiameng Liu, Yatao Huang et Minmin Li, « Phytohemagglutinin content in fresh kidney bean in China », International Journal of Food Properties, vol. 22, no 1,‎ , p. 405–413 (ISSN 1094-2912, DOI 10.1080/10942912.2019.1590399, lire en ligne, consulté le )
  10. (en) N. R. Reddy et M. D. Pierson, « Reduction in antinutritional and toxic components in plant foods by fermentation », Food Research International, vol. 27, no 3,‎ , p. 281–290 (ISSN 0963-9969, DOI 10.1016/0963-9969(94)90096-5, lire en ligne, consulté le )
  11. Donlaporn Saetae et Worapot Suntornsuk, « Toxic Compound, Anti-Nutritional Factors and Functional Properties of Protein Isolated from Detoxified Jatropha curcas Seed Cake », International Journal of Molecular Sciences, vol. 12, no 1,‎ , p. 66–77 (ISSN 1422-0067, PMID 21339978, PMCID 3039944, DOI 10.3390/ijms12010066, lire en ligne, consulté le )
  12. Guillaume Jean, Pierre Bergot et Sadasivam Kaushik, Nutrition et alimentation des poissons et crustacés, Editions Quae, (ISBN 978-2-7380-0810-7, lire en ligne)
  13. « Fermented cereals a global perspective. Chapter 1. », sur www.fao.org (consulté le )
  14. Ilka M. Vasconcelos et José Tadeu A. Oliveira, « Antinutritional properties of plant lectins », Toxicon: Official Journal of the International Society on Toxinology, vol. 44, no 4,‎ , p. 385–403 (ISSN 0041-0101, PMID 15302522, DOI 10.1016/j.toxicon.2004.05.005, lire en ligne, consulté le )
  15. (en) « Effects of intragastrically-administered Tepary bean lectins on digestive and immune organs: Preclinical evaluation », Toxicology Reports, vol. 5,‎ , p. 56–64 (ISSN 2214-7500, DOI 10.1016/j.toxrep.2017.12.008, lire en ligne, consulté le )
  16. (en) Vincent J. van Buul et Fred J. P. H. Brouns, « Health effects of wheat lectins: A review », Journal of Cereal Science, vol. 59, no 2,‎ , p. 112–117 (ISSN 0733-5210, DOI 10.1016/j.jcs.2014.01.010, lire en ligne, consulté le )
  17. Carmen Cuadrado, Gyongyi Hajos, Carmen Burbano et Mercedes M. Pedrosa, « Effect of Natural Fermentation on the Lectin of Lentils Measured by Immunological Methods », Food and Agricultural Immunology, vol. 14, no 1,‎ , p. 41–49 (ISSN 0954-0105, DOI 10.1080/09540100220137655, lire en ligne, consulté le )
  18. M. Hernández-Infante, V. Sousa, I. Montalvo et E. Tena, « Impact of microwave heating on hemagglutinins, trypsin inhibitors and protein quality of selected legume seeds », Plant Foods for Human Nutrition (Dordrecht, Netherlands), vol. 52, no 3,‎ , p. 199–208 (ISSN 0921-9668, PMID 9950081, DOI 10.1023/a:1008033610737, lire en ligne, consulté le )
  19. S. C. Noonan et G. P. Savage, « Oxalate content of foods and its effect on humans », Asia Pacific Journal of Clinical Nutrition, vol. 8, no 1,‎ , p. 64–74 (ISSN 0964-7058, PMID 24393738, lire en ligne, consulté le )
  20. Fichier technique de la fixation symbiotique de l'azote legumineuse/Rhizobium, Food & Agriculture Org., (ISBN 978-92-5-203199-4, lire en ligne)
  21. (en) JR Turnlund et al., A stable isotope study of copper absorption in young men: effect of phytate and alpha-cellulose, Am J Clin Nutr, Vol 42, 18-23
  22. E.R. Morris, R. Ellis, Phytate, Wheat Bran, and Bioavailabity of Dietary Iron. In Nutritional Bioavailability of Iron. ACS Symposium Series 203, American Chemical Society, 1982, page 121-141.
  23. (en) « Effects of soaking whole cereal and legume seeds on iron, zinc and phytate contents », Food Chemistry, vol. 89, no 3,‎ , p. 421–425 (ISSN 0308-8146, DOI 10.1016/j.foodchem.2004.03.040, lire en ligne, consulté le )
  24. G. Urbano, M. López-Jurado, P. Aranda et C. Vidal-Valverde, « The role of phytic acid in legumes: antinutrient or beneficial function? », Journal of Physiology and Biochemistry, vol. 56, no 3,‎ , p. 283–294 (ISSN 1138-7548, PMID 11198165, DOI 10.1007/BF03179796, lire en ligne, consulté le )
  25. (en) « The chemical diversity and distribution of glucosinolates and isothiocyanates among plants », Phytochemistry, vol. 56, no 1,‎ , p. 5–51 (ISSN 0031-9422, DOI 10.1016/S0031-9422(00)00316-2, lire en ligne, consulté le )
  26. Marie-Emilie Willemin et Annie Lumen, « Thiocyanate: a review and evaluation of the kinetics and the modes of action for thyroid hormone perturbations », Critical Reviews in Toxicology, vol. 47, no 7,‎ , p. 543–569 (ISSN 1040-8444, PMID 28632039, DOI 10.1080/10408444.2017.1281590, lire en ligne, consulté le )
  27. (en) Peter Felker, Ronald Bunch et Angela M. Leung, « Concentrations of thiocyanate and goitrin in human plasma, their precursor concentrations in brassica vegetables, and associated potential risk for hypothyroidism », Nutrition Reviews, vol. 74, no 4,‎ , p. 248–258 (ISSN 0029-6643, DOI 10.1093/nutrit/nuv110, lire en ligne, consulté le )
  28. « QUILLAIA EXTRACTS (JECFA Food Additives Series 48) », sur www.inchem.org (consulté le )
  29. (en) Sherif M. Hassan, Eid. A. Moussa et Louise C. Abbott, « Effects of Quillaja Saponin (Quillaja saponaria) on Early Embryonic Zebrafish (Danio rerio) Development », International Journal of Toxicology, vol. 27, no 3,‎ , p. 273–278 (ISSN 1091-5818, DOI 10.1080/10915810802152129, lire en ligne, consulté le )
  30. (en) K. Hostettmann, A. Marston, Saponins, Cambridge University Press, , 564 pages p. (ISBN 9780521020176, lire en ligne)
  31. (ja) Makoto Tanaka et al., « La saponine B de soja supprime l'élévation de la glycémie ソヤサポニンBの血糖上昇抑制効果 », Journal of Japan Society for Mibyou Systems Vol.12, n ° 1,‎ , p. 1 à 8 (lire en ligne)
  32. « MetaCyc soybean saponin I biosynthesis », sur biocyc.org (consulté le )
  33. Carole Drogoul, Raymond Gadoud, Marie-Madeleine Joseph et Collectif, Nutrition et alimentation des animaux d'élevage, Educagri Editions, (ISBN 978-2-84444-347-2, lire en ligne)
  34. Jonathan G. Cannon, Robert A. Burton, Steven G. Wood et Noel L. Owen, « Naturally Occuring Fish Poisons from Plants », Journal of Chemical Education, vol. 81,‎ , p. 1457 (DOI 10.1021/ed081p1457, lire en ligne, consulté le )
  35. (en) Ivonne M. C. M. Rietjens, Jochem Louisse et Karsten Beekmann, « The potential health effects of dietary phytoestrogens », British Journal of Pharmacology, vol. 174, no 11,‎ , p. 1263–1280 (ISSN 1476-5381, PMID 27723080, PMCID PMC5429336, DOI 10.1111/bph.13622, lire en ligne, consulté le )
  36. Baojun Xu et Sam K. C. Chang, « Total Phenolics, Phenolic Acids, Isoflavones, and Anthocyanins and Antioxidant Properties of Yellow and Black Soybeans As Affected by Thermal Processing », Journal of Agricultural and Food Chemistry, vol. 56, no 16,‎ , p. 7165–7175 (ISSN 0021-8561, DOI 10.1021/jf8012234, lire en ligne, consulté le )
  37. (en) « Transformation of isoflavone phytoestrogens during the fermentation of soymilk with lactic acid bacteria and bifidobacteria », Food Microbiology, vol. 23, no 8,‎ , p. 772–778 (ISSN 0740-0020, DOI 10.1016/j.fm.2006.01.002, lire en ligne, consulté le )
  38. Da-Hye Lee, Min Jung Kim, Jiyun Ahn et Sang Hee Lee, « Nutrikinetics of Isoflavone Metabolites After Fermented Soybean Product (Cheonggukjang) Ingestion in Ovariectomized Mice », Molecular Nutrition & Food Research, vol. 61, no 12,‎ (ISSN 1613-4133, PMID 28981201, PMCID 6139428, DOI 10.1002/mnfr.201700322, lire en ligne, consulté le )
  39. Eun-Young Kim, Tong-Kun Pai et Okhee Han, « Effect of bioactive dietary polyphenols on zinc transport across the intestinal Caco-2 cell monolayers », Journal of Agricultural and Food Chemistry, vol. 59, no 8,‎ , p. 3606–3612 (ISSN 1520-5118, PMID 21410257, PMCID 3087602, DOI 10.1021/jf104260j, lire en ligne, consulté le )
  40. (en) Magdalena Karamać, « Chelation of Cu(II), Zn(II), and Fe(II) by Tannin Constituents of Selected Edible Nuts », International Journal of Molecular Sciences, vol. 10, no 12,‎ , p. 5485–5497 (DOI 10.3390/ijms10125485, lire en ligne, consulté le )
  41. (en) Nicolai Petry, Ines Egli, Christophe Zeder et Thomas Walczyk, « Polyphenols and Phytic Acid Contribute to the Low Iron Bioavailability from Common Beans in Young Women », The Journal of Nutrition, vol. 140, no 11,‎ , p. 1977–1982 (ISSN 0022-3166, DOI 10.3945/jn.110.125369, lire en ligne, consulté le )
  42. I. C. Arts, B. van de Putte et P. C. Hollman, « Catechin contents of foods commonly consumed in The Netherlands. 1. Fruits, vegetables, staple foods, and processed foods », Journal of Agricultural and Food Chemistry, vol. 48, no 5,‎ , p. 1746–1751 (ISSN 0021-8561, PMID 10820089, DOI 10.1021/jf000025h, lire en ligne, consulté le )
  43. (en) Wojciech Koch, Wirginia Kukula-Koch et Kazimierz Głowniak, « Catechin Composition and Antioxidant Activity of Black Teas in Relation to Brewing Time », Journal of AOAC INTERNATIONAL, vol. 100, no 6,‎ , p. 1694–1699 (ISSN 1060-3271, DOI 10.5740/jaoacint.17-0235, lire en ligne, consulté le )
  44. (en) Prakash M. Dey, Elena Del Campillo, « Biochemistry of the multiple forms of glycosidases in plants », Advances in Enzymology and Related Areas of Molecular Biology, vol. 56,‎ , p. 141–249.
  45. (en) Edwin L. Murphy, Heide Horsley, and Horace K. Burr, « Fractionation of dry bean extracts which increase carbon dioxide egestion in human flatus », J. Agric. Food Chem., vol. 20, no 4,‎ , p. 813–817 (DOI 10.1021/jf60182a024).
  46. (en) Cristina Martínez-Villaluenga, Juana Frias, Concepción Vidal-Valverde, « Alpha-galactosides: anti-nutritional factors or functional ingredients? », Critical Reviews in Food Science and Nutrition, vol. 48, no 4,‎ , p. 305--306 (DOI 10.1080/10408390701326243)
  47. Oriane JOUBE, « Portail institutionnel de l'Université d'Avignon - [Publication] Les propriétés d'un antioxydant naturel, la sinapine », sur Portail institutionnel de l'Université d'Avignon (consulté le )
  48. Michel Larbier et Bernard Leclercq, Nutrition et alimentation des volailles, Editions Quae, (ISBN 978-2-7380-0336-2, lire en ligne)

Voir aussi

Articles connexes

Liens externes
  • Portail de la chimie
  • Portail de la biochimie
  • Portail de la biologie cellulaire et moléculaire
  • Alimentation et gastronomie
Cet article est issu de Wikipedia. Le texte est sous licence Creative Commons - Attribution - Partage dans les Mêmes. Des conditions supplémentaires peuvent s'appliquer aux fichiers multimédias.