Jaunisse nanisante de l'orge

La jaunisse nanisante de l'orge (JNO) est une maladie virale végétale, transmise par des pucerons, et causée par plusieurs souches virales classées dans deux espèces : le virus de la jaunisse nanisante de l'orge (Luteovirus) et le virus de la jaunisse nanisante des céréales (Polerovirus). Cette maladie, présente dans le monde entier, affecte exclusivement des espèces de plantes appartenant à la famille des Poaceae (graminées). Elle touche en particulier plusieurs cultures de grande importance économique, notamment l'orge, l'avoine, le blé, le maïs, le triticale et le riz. C'est la maladie virale la plus répandue chez les céréales.

Jaunisse nanisante de l'orge

Plants de blé rabougris après infection par le BYDV.

Type Maladie virale
Noms communs Jaunisse nanisante de l'orge
Agents virus de la jaunisse nanisante de l'orge (BYDV, Barley yellow dwarf virus, Luteovirus)
virus de la jaunisse nanisante des céréales (CYDV, Cereal yellow dwarf virus, Polerovirus)
Hôtes Famille des Poaceae (graminées, dont les céréales)
Vecteurs Pucerons (une quinzaine d'espèces)
Code OEPP BYDV00, CYDVR0
Répartition Cosmopolite

Biologie

Le virus de la jaunisse nanisante de l'orge (BYDV) est un virus à ARN simple brin à polarité positive (ssRNA). Le virion n'est pas enveloppé dans une membrane lipidique[1]. Le virus est transmis par des pucerons et sa classification taxinomique est fondée sur les différences d'organisation du génome (sérotypes)[2] et sur le principal puceron vecteur de chaque isolat.

Les isolats et leurs principaux vecteurs (indiqués entre parenthèses) sont les suivants[3] :

  • Sous-groupe I
  • Sous-groupe II, appelé « virus de la jaunisse nanisante des céréales » (CYDV, acronyme de Cereal Yellow Dwarf Virus), mais désormais reconnu comme une espèce distincte rattachée au genre Polerovirus de la famille des Luteoviridae

Pathologie

Le virus est transmis aux cellules du phloème des plantes au moment où les pucerons piquent les feuilles pour se nourrir de la sève. Une fois dans la plante, le virus commence à se répliquer et à assembler de nouveaux virions. Ce processus nécessite un apport significatif du métabolisme de la plante, et provoque les symptômes de la jaunisse nanisante de l'orge.

Les symptômes de la jaunisse nanisante de l'orge varient selon les cultivars affectés, l'âge de la plante au moment de l'infection, la souche du virus, et les conditions environnementales. Ils peuvent être confondus avec ceux d'autres maladies ou troubles physiologiques. Les symptômes apparaissent environ 14 jours après l'infection. Les plantes atteintes présentent un jaunissement ou un rougissement des feuilles (sur l'avoine et certains blés), un retard de croissance, un port dressé des feuilles raidies et épaissies, une croissance réduite des racines, un retard de l'épiaison (ou pas), et une diminution du rendement. Les épis des plantes malades ont tendance à rester érigés et à devenir noirs et décolorés pendant la maturation en raison de la colonisation par des champignons saprophytes. Les jeunes plants sont les plus sensibles.

Les feuilles de blé infectées ont une aptitude réduite à la photosynthèse.

Le virus est transmis du phloème aux pucerons lorsque ceux-ci se nourrissent. Lorsque le puceron se nourrit, les virions pénètrent dans l'intestin postérieur de l'insecte, la protéine d'enveloppe du virus est reconnue par l'épithélium de l'intestin postérieur, et le virion est autorisé à passer dans hémolymphe de l'insecte, où il peut rester indéfiniment, mais le virus ne peut pas s'y reproduire[4]. Le virus est transporté activement dans les glandes salivaires accessoires où il est stocké avant d'être libéré dans les canaux et les conduits salivaires. Le virus est ensuite excrété dans la salive du puceron au cours de sa prochain piqûre alimentaire et inoculé dans la plante.

La gamme d'hôtes du BYDV comprend plus de 150 espèces de la famille des Poaceae. Un grand nombre de graminées annuelles et vivaces sont des hôtes alternatifs du BYVD et peuvent servir de réservoirs au virus.

Transmission

Il existe deux sources principales par lesquelles les cultures de céréales peuvent être infectées :

  1. par des pucerons aptères non-migrants déjà présents dans la parcelle lors du semis et qui colonisent les nouveaux plants dès la germination. C'est la phase d'inoculation primaire.
  2. par des pucerons ailés capables de coloniser les cultures en provenant de parcelles adjacentes. Ces pucerons se reproduisent et leurs descendants colonisent les plantes voisines. C'est la phase d'inoculation secondaire.

Effet sur les récoltes

L'effet sur les récolte est variable et dépend de plusieurs facteurs, notamment la souche virale concernée, l'époque de l'infection et le taux de diffusion des pucerons. Les pertes les plus importantes sont consécutives à des infections précoces et peuvent entraîner des baisses de rendement allant jusqu'à 50 %.

Méthodes de lutte

Les sources d'inoculation primaire doivent être labourées aussitôt que possible. Une solution alternative est l'application d'un herbicide dessicant dix jours avant la mise en culture. Des pulvérisations d'insecticides, à l'aide de pyréthrinoïdes de synthèse, peuvent être effectuées lors de la levée des cultures.

Les dates de semis en ligne avant la mi-octobre favorisent les attaques de pucerons ailés migrants. Cependant, des pertes de rendement peuvent être ressenties en cas de semis tardifs. Des pulvérisations d'insecticides dans ce cas visent donc à tuer les pucerons avant que se produise une pullulation importante.

Notes et références

  1. (en) « 00.039.0.01.001. Barley yellow dwarf virus-PAV », sur ICTVdB - The Universal Virus Database, International Committee on Taxonomy of Viruses, .
  2. (en) Ali, M, Tahir, M, Hameed, S, Ashraf, M, « Coat protein based molecular characterization of Barley yellow dwarf virus isolates identified on oats in Pakistan », Acta Virologica, vol. 57, no 3, , p. 383-385 (PMID 24020768, résumé).
  3. (en) W.A. Miller et L. Rasochova, « Barley yellow dwarf viruses », Annual Review of Phytopathology, vol. 35, , p. 167-190 (DOI 10.1146/annurev.phyto.35.1.167, lire en ligne).
  4. (en) S. Gray et F.E. Gildow, « Luteovirus-aphid interactions », Annual Review of Phytopathology, vol. 41, , p. 539-566 (DOI 10.1146/annurev.phyto.41.012203.105815, résumé).
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